Punkcja kapilarna Procedura
ROUTINE CAPILLARY PUNCTURE BLOOD COLLECTION GUIDELINES
Punkcja kapilarna
- Punkcja kapilarna może być stosowana do uzyskiwania próbek u niemowląt lub u dorosłych, gdzie
punkcja dożylna jest trudna. - Próbki od niemowląt w wieku poniżej 6 miesięcy są zwykle pobierane przez nakłucie pięty.
Pacjenci w wieku powyżej 6 miesięcy powinni mieć pobierane próbki kapilarne przez nakłucie palca. - Próbki kapilarne są pobierane do mikrokanalików z kolorowymi kapturkami, które służą do
identyfikacji dodatku do mikrokanalików.
UWAGA
- Próbki kapilarne nie są odpowiednie do badania posiewów krwi i większości testów krzepliwości.
- Próbki kapilarne mogą być pobierane na bibułę filtracyjną i wysyłane do laboratorium w celu przeprowadzenia badań tylko dla
konkretnych testów. Patrz katalog testów online, aby zapoznać się z wymaganiami dotyczącymi pobierania poszczególnych testów. - Próbki kapilarne mogą być natychmiast wykorzystane do testów w punktach opieki.
MATERIAŁY
1. Lancety
2. Probówki do pobierania krwi w mikrotainerach.
- Rurki z różnymi dodatkami są używane do pobierania próbek krwi do określonych rodzajów
testów.
3. Zalecana kolejność pobierania próbek do mikrotainerów:
- Lawendowe mikrotainery EDTA
- Zielony -Heparyna litowa
- Miętowy zielony -Heparyna litowa PST
- Szary
- Złoty -SST
- Czerwony-Bez dodatku
4. Bibuła filtracyjna (jeśli wymagana)
5. Rękawice bez lateksu
6. Urządzenie do ogrzewania
7. Środek antyseptyczny. Indywidualnie pakowane chusteczki z 70% alkoholem izopropylowym
8. Gaza 2×2
9. Pojemnik do usuwania ostrych narzędzi. Dopuszczalny przez OSHA, odporny na przebicie pojemnik oznaczony
„Biohazardous”.
10. Bandaże lub taśma
BEZPIECZEŃSTWO
1. Przestrzegać uniwersalnych (standardowych) środków ostrożności. Przestrzegać wszystkich obowiązujących procedur izolacyjnych.
2. Środki ochrony indywidualnej będą noszone przez cały czas.
3. Myć ręce w ciepłej, bieżącej wodzie przy użyciu odpowiedniego środka do mycia rąk lub, jeśli nie są
widocznie zanieczyszczone, przy użyciu komercyjnego pieniącego środka do mycia rąk przed i po
każdym pobraniu od pacjenta.
4. Rękawice muszą być noszone podczas wszystkich procedur pobierania krwi i zmieniane pomiędzy
pobraniami od pacjentów.
5. Podczas procedur pobierania krwi należy nosić fartuch laboratoryjny lub togę.
6. Lancety wyrzuca się do odpowiedniego pojemnika na ostre przedmioty jako jedną sztukę.
7. Rękawice należy wyrzucić do odpowiedniego pojemnika natychmiast po zakończeniu procedury pobierania krwi.
8. Wszystkie inne przedmioty użyte do procedury muszą być usunięte zgodnie z właściwymi zasadami usuwania odpadów biologicznych.
9. Zanieczyszczone powierzchnie muszą zostać wyczyszczone świeżo przygotowanym 10% roztworem wybielacza. Wszystkie
powierzchnie są codziennie czyszczone wybielaczem.
10. W przypadku przypadkowego zakłucia, natychmiast umyć miejsce mydłem antybakteryjnym,
wycisnąć krew z rany i skontaktować się z przełożonym.
Postępowanie
1. Zidentyfikuj pacjenta. Wymagane są dwie formy aktywnej identyfikacji. Poprosić pacjenta lub
opiekuna o podanie imienia i nazwiska oraz daty urodzenia pacjenta. Informacje te muszą być zgodne z
zapytaniem.
2. Zapewnić pacjenta, że zostanie pobrana minimalna ilość krwi wymagana do badania.
3. Wybrać odpowiednie mikrotainery dla próbek, które mają być pobrane. Wszystkie mikrotainery
zawierające dodatki powinny być ostukiwane w celu usunięcia dodatków ze ścianek i górnej części.
4. Umyć ręce i założyć rękawiczki.
5. Ułożyć pacjenta z wyciągniętym ramieniem tak, aby tworzyło linię prostą od barku do nadgarstka.
6. Nie próbować nakłuwać kapilary więcej niż dwa razy. W przypadku niepowodzenia powiadomić przełożonego lub lekarza pacjenta
.
KCIUŚ KOŁOWY
1. Ułóż niemowlę w pozycji z lekko uniesioną głową.
2. Ogrzej piętę, z której ma być pobrana krew. Można użyć dostępnego w handlu podgrzewacza do pięt.
3. Oczyścić piętę preparatem alkoholowym, a następnie osuszyć sterylną ściereczką 2×2, ponieważ alkohol może wpływać na wyniki testu
.
4. Używając sterylnego lancetu, nakłuć najbardziej przyśrodkową lub boczną część powierzchni podeszwowej
pięty, przyśrodkowo do linii poprowadzonej w kierunku tylnym od połowy dużego palca do pięty.
5. Nakłuć nie głębiej niż 2,4 mm (około 0,1 cala).
6. Nakłucia tylnej krzywizny kabiny pięty powodują uszkodzenie kości.
7. Należy unikać poprzednich miejsc nakłuć. Unikać stłuczenia pięty niemowlęcia podczas pobierania
krwi.
8. Pierwszą kroplę krwi wytrzeć jałową gazą 2×2.
9. Odczekać, aż powstanie kolejna duża kropla krwi. Lekko dotknąć przyrządem do pobierania kapilar z mikrotainera
(lub bibułą filtracyjną) do DUŻEJ kropli krwi. Zbierz krople krwi do przyrządu do pobierania
delikatnie masując piętę. Unikać nadmiernego nacisku, który może spowodować wyciśnięcie płynu tkankowego do kropli krwi. Napełnić probówkę(i) z mikrotainerem według potrzeby, przestrzegając kolejności pobierania.
10. Zakręcić, obrócić i odwrócić mikrotainer w celu wymieszania pobranej krwi.
11. Po zakończeniu oczyścić miejsce wkłucia i zastosować ucisk za pomocą czystej gazy, aby zatrzymać krwawienie. Założyć opatrunek samoprzylepny.
12. Oznaczyć wszystkie próbki zgodnie z przyjętymi wytycznymi.
13. Umieścić oznakowane próbki w torebce typu zip lock i dostarczyć do laboratorium tak szybko, jak to możliwe.
KLEJ DO PALCÓW
1. Ułożyć pacjenta tak, aby ręka była łatwo dostępna.
2. Oczyścić opuszkę palca trzeciego (środkowego) lub czwartego (serdecznego) preparatem alkoholowym. Pozostawić
palec do wyschnięcia lub wytrzeć do sucha sterylną gazą 2×2.
3. Używając sterylnego lancetu, nakłuć opuszkę palca w mięsistej części palca, nieco z boku
środka i w poprzek (prostopadle do) rowków opuszki palca. Pozwala to krwi
uformować się w postaci kropli na opuszku palca. Jeżeli nakłucie jest równoległe do linii odcisku palca, krew
nie utworzy się w postaci kropli, lecz spłynie po palcu, utrudniając pobranie.
4. Wytrzeć pierwszą kroplę krwi sterylną gazą 2×2.
5. Pozwolić, aby utworzyła się kolejna duża kropla krwi. Lekko dotknąć przyrządem do pobierania kapilar z mikrotainera
(lub bibułą filtracyjną) do DUŻEJ kropli krwi. Zbierz krople krwi do przyrządu do pobierania
delikatnie masując palec. Unikać nadmiernego nacisku, który może spowodować wyciśnięcie płynu tkankowego do kropli krwi. Napełnić probówkę(i) z mikrotainerem zgodnie z potrzebą.
6. Zakręcić, obrócić i odwrócić mikrotainer, aby wymieszać zebraną krew.
7. Po zakończeniu oczyścić miejsce i zastosować ucisk za pomocą czystej gazy, aby zatrzymać krwawienie. Nałożyć opatrunek samoprzylepny.
8. Oznaczyć wszystkie próbki zgodnie z przyjętymi wytycznymi.
9. Umieścić oznakowane próbki w torbie typu zip lock i dostarczyć do laboratorium tak szybko, jak to możliwe.
POBIERANIE PAPIERU FILTROWEGO
1. Pozwól, aby krew przesiąkła i całkowicie wypełniła wydrukowany wcześniej okrąg na bibule filtracyjnej.
2. Bibuła filtracyjna powinna dotykać tylko krwi, a nie pięty lub palca.
3. Nałóż tylko JEDNĄ kroplę krwi na okrąg. Nie dodawać krwi do kółka już wypełnionego lub
częściowo wypełnionego krwią.
4. Nanieść krew na zadrukowaną stronę bibuły filtracyjnej.
5. Upewnij się, że krew całkowicie nasyca wszystkie cztery (4) okręgi i jest widoczna z obu
stron.
6. Jeżeli przepływ krwi jest zmniejszony, powtórz nakłuwanie kapilary, aby zakończyć pobieranie.
7. Pozostaw bibułę filtracyjną do wyschnięcia na powietrzu przez dwie (2) godziny w temperaturze pokojowej. Unikać umieszczania próbki na gorących powierzchniach, takich jak lampy bilijne lub monitory.
8. Przekazać wypełnione/suche próbki do laboratorium tak szybko, jak to możliwe.
9.