DNasa I (sin RNasa)

¡Sólo para uso in vitro!

Definición de unidad: Una unidad Kunitz se define como la cantidad de enzima necesaria para producir un aumento de la absorbancia de 260 nm de 0,001/min/ml a 25°C de ADN altamente polimerizado.

Envío: se envía en hielo azul

Condiciones de almacenamiento: almacenar a -20 °C
evitar los ciclos de congelación/descongelación

Vida útil: 12 meses

Forma: líquida (Se suministra en 10 mM Tris-HCl pH 7.5, 10 mM CaCl2, 10 mM MgCl2 y 50 % de glicerol)

Concentración: 2 unidades/μl

Aplicaciones:
La DNasa I se añade comúnmente a los reactivos de lisis celular para eliminar la viscosidad causada por el contenido de ADN en los lisados de células bacterianas o para eliminar las plantillas de ADN del ARN producido por transcripción in vitro.
La DNasa I elimina el ADN no deseado de los lisados celulares para mejorar la eficacia de la extracción de proteínas.

Descripción:
La DNasa I (libre de RNasa), desoxirribonucleasa I, es un polipéptido único y glicosilado que degrada el ADN de cadena simple y doble. La enzima actúa escindiendo el ADN en fosfodinucleótidos de 5′ y pequeños fragmentos de oligonucleótidos.
La DNasa I se utiliza para aplicaciones que requieren la digestión del ADN en las que es crucial evitar daños en el ARN.

Condiciones de reacción
1x tampón de reacción DNasa I
Incubación a 37°C

10x tampón de reacción DNasa I:
100 mM Tris-HCl pH 7,6 (25°C)
25 mM MgCl2
5 mM CaCl2

Inactivación:
La DNasa I se inactiva calentándola a 65 °C durante 10 minutos. Los niveles elevados de iones monovalentes como Na+ y K+ (es decir, 100 mM) disminuirán la actividad de la DNasa I.

Actividad:
> 2500 unidades/mg de proteína

La actividad de la DNasa I también se mide en «unidades de ensayo de degradación» definidas como la cantidad de enzima necesaria para degradar completamente 1 μg de ADN de plásmido en 10 minutos a 37 °C en 10 mM Tris-HCl pH 7.5, 50 mM MgCl2 y 13 mM CaCl2.
1 ‘Unidad de ensayo de degradación’ equivale a 0,3 ‘Unidades Kunitz’.

Citaciones del producto:
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Referencias seleccionadas:
Sambrook et al. (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd ed. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press 10.6
Tabor et al. (1997) DNA-Dependent DNA Polymerases. En: Current Protocols in Molecular Biology. Ausubel et al., eds. Wiley & Sons Inc. 3.5.4-6.
Pan et al. (1999) Ca2+- dependent activity of human DNase I and its hyperactive variants. Protein Sci. 8:1780.

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