Ergebnisse
Grundlegende Membraneigenschaften.
Die in dieser Studie beschriebenen Ergebnisse wurden von 61 Neuronen des IO (d.h. Hauptolive, akzessorische Oliven und dorsale Kappe von Kooy) erhalten, die mit der in vivo-Ganzzellaufzeichnungstechnik gemessen wurden. Die in vivo gemessenen grundlegenden Membraneigenschaften waren mit denen vergleichbar, die in vitro gemessen wurden (2, 16-18). Die in vivo aufgezeichneten IO-Neuronen feuerten Aktionspotenziale mit einer durchschnittlichen Frequenz von 0,87 ± 0,22 Hz und einer mittleren Regelmäßigkeit von 0,74 ± 0,02 ab. Sie hatten ein Ruhemembranpotenzial von -55,6 ± 0,7 mV, eine Membrankapazität von 184,0 ± 11,3 pF und einen Eingangswiderstand von 45,9 ± 4,2 MΩ. Das elektrophysiologische Verhalten der IO-Neuronen wurde durch Injektion positiver und negativer Stromimpulse weiter untersucht (Abb. 1 A und B). Im Gegensatz zu früheren In-vitro-Studien, die häufig einen starken „depolarisierenden Durchhang“ als Folge der Aktivierung von H-Strömen (19, 20) zeigten, wurde in unserer In-vivo-Studie nur in einer Minderheit der Fälle ein depolarisierender Durchhang festgestellt (18 %; Abb. 1 A). Darüber hinaus löste dieselbe negative Strominjektion in der Mehrheit der Fälle (61 %) eine starke Rebound-Depolarisation aus. Eine Erhöhung der Amplitude des negativen Stroms führte zu einer Zunahme der Rebound-Depolarisation und schließlich zu einem somatischen Ca2+-Spike mit niedriger Schwelle (Abb. 1 A), der wiederum einen schnellen Natrium-Spike auslöste. Intrazelluläre depolarisierende Stromimpulse lösten kaum Aktionspotentiale oder Spike-Adaptation aus, und auf depolarisierende Schritte folgte nur in 23 % der Zellen ein hyperpolarisierender Abfall (Abb. 1 B).