Lernaea (Ankerwurm) Infestationen in Fischen1

Natalie Steckler und Roy P. E. Yanong2

Einführung

Lernaea-Arten, die gemeinhin als „Ankerwürmer“ bekannt sind, sind Krebstiere, Copepoden-Parasiten, die viele Arten von Süßwasserfischen, insbesondere Wildfänge und Teichfische, befallen und Krankheiten und Todesfälle verursachen können. Der Befall mit Lernaea ist in den Sommermonaten am stärksten und tritt häufiger in stehenden oder langsam fließenden Gewässern auf.

Etwa 110 Arten von Lernaeiden (Lernaea und Lernaea-ähnliche Parasiten) wurden beschrieben. Lernaea cyprinacea, eine der häufigeren Arten, ist weltweit verbreitet. Sie kommt am häufigsten bei Cypriniden vor, darunter Koi, Karpfen und Goldfische; sie kann jedoch auch andere Fischarten befallen und hat in Teichen, die auch mit Großkopfkarpfen besetzt waren, große Todesfälle bei Welsen aus Arkansas verursacht. Es wurde auch berichtet, dass Lernaea Amphibien befällt.

Lebenszyklus von Lernaea

Da Lernaea ein Copepode und Krebstier ist, ist er mit Krabben, Hummern und Garnelen verwandt, die alle einen mehrstufigen Lebenszyklus haben (Abbildung 1). Lernaea ist jedoch ungewöhnlich, da die meisten Copepodenarten freilebend sind und keine Krankheiten verursachen. Obwohl die Organismen dieser Gruppe komplexe Lebenszyklen haben, müssen sie nicht über einen Zwischenwirt gehen, sondern können sich direkt von Fisch zu Fisch verbreiten. Dieser direkte Lebenszyklus kann 18 bis 25 Tage dauern, und der Organismus braucht nur einen Fisch (oder eine Amphibie), um sich vom Ei zum ausgewachsenen Tier zu entwickeln. Der Lebenszyklus der Lernaeiden ist ähnlich, unabhängig davon, ob der Wirt ein Fisch oder eine Amphibie ist, aber der Einfachheit halber wird sich dieser Artikel auf Infektionen in Fischen konzentrieren.

Abbildung 1.

Lebenszyklus von Lernaea (Ankerwurm). Der gesamte Lebenszyklus kann 18-25 Tage bei etwa 25°C-30°C dauern.

Credit:

UF/IFAS Tropical Aquaculture Laboratory

Die verschiedenen Lebensstadien während der Entwicklung leben auf und neben dem Fisch. Nachdem sich ein männlicher und ein weiblicher Parasit gepaart haben, stirbt das Männchen, und das Weibchen bohrt sich in das Gewebe des Wirts und setzt sich schließlich mit einem großen Anker an seinem vorderen („Kopf“) Ende dauerhaft in die Haut und Muskeln des Fisches ein (Abbildung 2). Das Weibchen reift zu einem erwachsenen Tier heran und kann innerhalb von 24 Stunden damit beginnen, Eier aus einem Paar Säcke an seinem hinteren Ende freizusetzen (Abbildung 3). Jedes freigesetzte Ei schlüpft innerhalb von 24-36 Stunden. Die Weibchen sind sehr produktiv und können bei Temperaturen über 25°C bis zu 16 Wochen lang alle zwei Wochen bis zu 250 Jungfische (Nauplien) produzieren.

Abbildung 2.

Koi befallen mit zahlreichen weiblichen Lernaea.

Credit:

UF/IFAS Tropical Aquaculture Laboratory

Abbildung 3.

Ausgewachsenes Weibchen, vom Fisch entfernt. Man beachte den „Anker“ auf der rechten Seite, der sich in den Fisch einbettet, und die gepaarten Eiersäcke auf der linken Seite.

Credit:

UF/IFAS Tropical Aquaculture Laboratory

Neugeschlüpfte Nauplien sind freilebend (nicht parasitär) und entwickeln sich in etwa 4 Tagen durch drei verschiedene Nauplienstadien. Zu diesem Zeitpunkt häuten sie sich in das erste Copepodiden-Stadium, werden parasitisch und heften sich an einen Wirt, oft an den Kiemen. In den nächsten 7 Tagen durchläuft der Parasit fünf verschiedene Copepodidenstadien. Die Copepodidenstadien befinden sich in der Regel auch auf den Kiemen, sind aber nicht dauerhaft im Gewebe eingebettet. Im letzten Copepodidenstadium löst sich das Männchen ab, aber das Weibchen bleibt parasitisch, indem es sich an den aktuellen Wirt heftet oder zu einem anderen Fisch wechselt. Erwachsene Männchen sterben innerhalb von 24 Stunden. In einer Studie dauerte der gesamte Lebenszyklus etwa 18-25 Tage, wenn die Fische bei 29°C gehalten wurden.

Der optimale Temperaturbereich für Lernaea liegt bei 26°C-28°C. Fallen die Temperaturen unter 20°C, können die jungen Lernaea ihre Entwicklung nicht abschließen, und bei 14°C können sich die Weibchen nicht fortpflanzen. Ausgewachsene Weibchen können jedoch auf dem Fischwirt überwintern und Eier produzieren, wenn sich die Wassertemperaturen im Frühjahr erwärmen.

Erkrankungen bei Fischen durch Lernaea

Gebräuchliche Infektionsstellen für Lernaea sind die Haut, Flossen, Kiemen und die Mundhöhle (Abbildung 2). Eine große Anzahl von Lernaea in Copepodidenstadien kann kleine Fische töten, indem sie ihre Kiemen beschädigt und den Fischen das Atmen erschwert. Wenn sich die weiblichen Parasiten an den Fischen festsetzen, graben sie sich tief in das Gewebe ein und setzen schließlich einen vorderen Anker in den Körper des Fisches. An der Anheftungsstelle kann es zu starken Entzündungen und Blutungen kommen, so dass der Bereich rot und geschwürig erscheint.

Eine Infektion mit einer geringen Anzahl von Parasiten ist zwar nicht unbedingt tödlich, aber für den Fisch äußerst irritierend. Lernaea können starke Entzündungen verursachen, die zu sekundären bakteriellen (z. B. Aeromonas hydrophila) und Pilzinfektionen führen. Diese Sekundärinfektionen verschlimmern sich manchmal und führen zum Tod des Fisches. Eine größere Anzahl von Parasiten an den Kiemen kann die Atmung beeinträchtigen und zum Tod führen. Fische können eine Lernaea-Infektion überleben, aber chronische Zustände führen häufig zu schlechtem Wachstum und schlechter Körperkondition.

Diagnose

Mit bloßem Auge erscheint das am häufigsten beobachtete Lebensstadium des Organismus – das erwachsene Weibchen – als kleiner, dünner „Faden“ oder „Haar“ von etwa 25 mm Länge. Unter dem Mikroskop zeigt sich der lange, röhrenförmige Körper mit einem Anker am vorderen Ende und paarigen Eiersäcken am hinteren Ende (Abbildung 3). Der Anker, der sich im vorderen Bereich („Kopf“) befindet, ist in der Regel in das Gewebe des Wirts eingebettet, während das hintere Ende mit den Eiersäcken in die Wassersäule hinausragt. Juvenile Lebensstadien, insbesondere die Copepodidenstadien, können mit Hilfe eines Mikroskops auch auf Haut-, Flossen- oder Kiemenproben gesehen werden (Abbildung 1). Da erwachsene weibliche Lernaea mit Pflanzenfasern, Pilzen oder anderen Organismen verwechselt werden können, sollte für eine genaue Diagnose ein Fischmediziner konsultiert werden. Um das Vorhandensein dieses Parasiten zu bestätigen, müssen Nasspräparate der betroffenen Bereiche (Haut, Kiemen, Mundhöhle, Flossen) unter dem Mikroskop untersucht werden.

Behandlung

Einzelne Lernaeen können mit einer Pinzette aus den betroffenen Fischen entfernt werden. Die Entfernung ist jedoch nicht immer vollständig; manchmal bleibt der Ankerteil eingebettet. Die Zangenmethode ist in großem Maßstab unpraktisch, weshalb andere Methoden empfohlen werden. Unabhängig von der verwendeten Methode ist eine Behandlung des gesamten Systems erforderlich, um alle Fische zu behandeln und alle Lebensstadien des Parasiten zu bekämpfen, einschließlich der Stadien, die vom Wirt überleben. Ausgewachsene weibliche Lerchen können 30 Tage auf einem Fischwirt überleben und sind widerstandsfähiger als jüngere Lebensstadien; daher sollte die Behandlung über mehrere Wochen fortgesetzt werden.

Es gibt eine Reihe von Methoden zur wirksamen Bekämpfung von Lernaea, aber die Empfehlungen hängen von der Fischart und der jeweiligen Situation ab. Eine Beratung mit einem Fischmediziner ist notwendig, um den legalen und angemessenen Einsatz von Medikamenten oder Pestiziden sicherzustellen. Es sei darauf hingewiesen, dass die einzige verfügbare Behandlungsmethode für Lernaea bei Speisefischarten Salz ist. Salz wurde als Mittel zur Behandlung von Lernaea mit unterschiedlichen Ergebnissen erforscht. In einer Salzstudie mit L. cyprinacea überlebte ein Prozentsatz der erwachsenen Weibchen eine längere Exposition von bis zu 22,4 g/l Meerwasser (ppt) für bis zu 6 Tage. Bei 25,6 ppt wurden die erwachsenen Tiere bereits am zweiten Tag getötet. Andererseits schlüpften bei 8 g/l Meerwasser keine Eier von Lernaeiden, und die Entwicklung jüngerer Lebensstadien, die schlüpften, wurde verhindert, wenn die Parasiten mindestens 5-6 Tage lang bei 4,8 g/l ausgesetzt waren. Für Speisefische, die den Salzgehalt tolerieren können, ist 4,8 g/l Meerwasser für bis zu 30 Tage die beste Wahl zur Bekämpfung des Parasiten, da andere Medikamente und Pestizide für die Behandlung von Speisefischen nicht zugelassen sind. Da erwachsene weibliche Lerchen salztoleranter sind, können zusätzliche Maßnahmen erforderlich sein, um den Lebenszyklus des Parasiten wirksam zu unterbrechen. Wenn man die Fische für 7 Tage aus dem System entfernt, wird der Lebenszyklus im Becken unterbrochen, da die Larvenstadien in diesem Zeitraum ohne Wirt nicht überleben können.

Für Fischarten, die nicht für den Verzehr bestimmt sind, wie z. B. Zierfische oder Heimaquarien, gibt es neben Salz weitere Behandlungsmöglichkeiten. Längeres Eintauchen in ein Organophosphat wie Trichlorfon ist eine wirksame Behandlung für Zierfische. Ein 30-minütiges Bad mit 25 mg/L Kaliumpermanganat tötet die Larven der Larven ab, die erwachsenen Tiere können jedoch überleben. Diflubenzuron (auch als Dimilin bekannt) ist ein Pestizid, das das Wachstum des Parasiten beeinträchtigt und bei einer Dosis von 0,066 mg Diflubenzuron/Liter die sich mausernden adulten und larvalen Stadien abtötet. (Auch hier gilt: Wenn die oben beschriebenen Medikamente oder Pestizide nicht in Frage kommen, sollte 4,8 g/L Meerwasser für bis zu 30 Tage helfen, den Parasiten zu bekämpfen, solange die Fische diesen Salzgehalt vertragen. Die Fische können auch für 7 Tage aus dem System entfernt werden, um den Lebenszyklus der Lernaea im Becken zu unterbrechen.)

Wunden, die aus einer Infektion mit Lernaea resultieren, sollten genau überwacht werden, und die optimale Wasserqualität sollte für die Dauer der Behandlung aufrechterhalten werden, um das Risiko einer bakteriellen oder pilzlichen Sekundärinfektion zu minimieren. Interessanterweise gibt es Hinweise darauf, dass erfolgreich behandelte Fische gegen zukünftige Infektionen mit Lernaea resistent werden können.

Vorbeugung

Eingehende Fische müssen streng unter Quarantäne gestellt und getestet werden, um die Einschleppung von Lernaea in ein System zu vermeiden. Dies ist besonders bei Speisefischen wichtig, da die Behandlungsmöglichkeiten so begrenzt sind. Vor dem Einsetzen in ein System sollten alle Fische, insbesondere Hochrisikoarten wie Karpfen (z. B. Goldfische und Kois), visuell auf erwachsene Parasiten untersucht und dann während der Quarantäne regelmäßig überwacht werden. Wird der Parasit entdeckt, führt ein frühzeitiges Eingreifen zu den besten Ergebnissen.

Diskussion

Lernaea-Befall ist besonders häufig bei Cypriniden, einschließlich Koi, Goldfischen und anderen verwandten Karpfen, anzutreffen, obwohl auch zahlreiche andere Süßwasserarten empfänglich sind. Einzelne Parasiten können schwerwiegende fokale Schäden am befallenen Gewebe verursachen, was das Risiko einer Infektion mit bakteriellen und pilzlichen Krankheitserregern in der Umgebung erhöht. Es gibt mehrere wirksame Therapien zur Bekämpfung von Lernaeiden; die Möglichkeiten für die Produktion von Speisefischen und Teichen sind jedoch sehr begrenzt. Um eine Einschleppung des Parasiten zu vermeiden, wird eine Quarantäne und ein Screening der Fische dringend empfohlen.

Referenzen und Leseempfehlungen

Goodwin, A. E. 1999. „Massiver Befall mit Lernaea cyprinacea, der die Kiemen von Kanalwelsen schädigt, die mit Großkopfkarpfen polykultiviert werden.“ Journal of Aquatic Animal Health 11:406-408.

Ho, J. S. 1996. „Cladistics of the Lernaeidae (Cyclopoida), a major family of freshwater fish parasites.“ Journal of Marine Systems 15:177-183.

Hoffman, G. L. 1999. Parasites of North American Freshwater Fishes, second ed. Ithaca, NY: Cornell University Press.

Kupferberg, S. J., A. Catenazzi, K. Lunde, A. J. Lind, and W. J. Palen. 2008. „Parasitische Copepoden (Lernaea cyprinacea) bei gelbbeinigen Fröschen (Rana boylii) in Verbindung mit ungewöhnlich warmen Sommern und Missbildungen bei Amphibien in Nordkalifornien.“ Copeia 3:529-537.

Lester, R. J. G., und C. J. Hayward. 2006. Phylum Arthropoda. In Fish Diseases and Disorders, vol. 1: protozoan and metazoan infections, second ed. P.T.K. Woo, Herausgeber. CAB International, London, England. Pp. 466-565.

Longshaw, M., and S. W. Feist. 2001. Parasitic diseases. In BSAVA Manual of Ornamental Fish, second ed. W.H. Wildgoose, editor. British Small Animal Veterinary Association, Gloucester, England. Pp. 167-183.

Noga, E. J. 2010. Fish Disease: Diagnosis and Treatment, second ed. Ames, IA: Wiley-Blackwell.

Shields, R. J. 1978. „Procedures for the laboratory rearing of Lernaea cyprinacea L. (Copepoda).“ Crustaceana 35:259-264.

Shields, R. J., and R.P. Goode. 1978. „Host rejection of Lernaea cyprinacea L. (Copepoda).“ Crustaceana 35:301-307.

Stoskopf, M. K. 1993. Fish Medicine. Philadelphia, PA: W.B. Saunders Company.

Footnotes

Dieses Dokument ist FA185, eines aus einer Serie der School of Forest Resources and Conservation, Program in Fisheries and Aquatic Sciences, UF/IFAS Extension. Ursprüngliches Veröffentlichungsdatum Dezember 2012. Überarbeitet im Januar 2021. Besuchen Sie die EDIS-Website unter https://edis.ifas.ufl.edu für die aktuell unterstützte Version dieser Veröffentlichung.

Natalie Steckler, Doktorandin; und Roy P. E. Yanong, außerordentlicher Professor und Extension-Tierarzt, School of Forest Resources and Conservation, Program in Fisheries and Aquatic Sciences, UF/IFAS Tropical Aquaculture Laboratory, Ruskin, FL 33570.

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